
Poradnik
GHK-Cu: budowa, analityka i praca z odczynnikiem w badaniach
W GHK-Cu niezmodyfikowany tripeptyd Gly-His-Lys wiąże jon miedzi(II). Poradnik wyjaśnia nazewnictwo, wiązanie miedzi, odróżnienie od pokrewnych cząsteczek, oczekiwane masy w certyfikacie analizy oraz przechowywanie odczynnika i pracę z nim.
Wyłącznie do celów badawczych- Opublikowano2026-09-24
- Zaktualizowano2026-09-24
- AutorRedakcja GPeptides (operator sklepu)
Przegląd i nazewnictwo
GHK-Cu oznacza kompleks peptydu z metalem: tripeptyd GHK zawiera związany jon miedzi(II). Trzy litery to jednoliterowe kody glicyny (G), histydyny (H) i lizyny (K), a przyrostek „-Cu” to symbol chemiczny miedzi. Warianty takie jak Cu-GHK, tripeptyd miedziowy czy Copper Peptide oznaczają ten sam kompleks, choć niekoniecznie tę samą stechiometrię czy ten sam przeciwjon.
W katalogu cząsteczka występuje w czterech produktach: „GHK-Cu” to pojedyncza fiolka, a w zestawie „GLP-3 + GHK-Cu” zajmuje osobną fiolkę. „GLOW Stack” i „KLOW” to nazwy handlowe blendów, w których GHK-Cu zgodnie z przyjętą na rynku konwencją jest jednym z kilku składników w tym samym liofilizacie. W izolacji peptyd miedziowy można więc analizować tylko w pojedynczej fiolce i w zestawie.
Budowa w szczegółach
Sekwencja to Gly-His-Lys. Ponieważ glicyna jako jedyny aminokwas proteinogenny jest achiralna, tripeptyd ma tylko dwa centra stereogeniczne, oba w konfiguracji L. W odróżnieniu od wielu dłuższych peptydów badawczych GHK nie jest modyfikowany:
- Brak N-końcowej acetylacji: wolna grupa aminowa glicyny należy do miejsca wiązania miedzi. Grupa acetylowa zablokowałaby właśnie tę pozycję.
- Brak C-końcowej amidacji: lizyna kończy się wolną grupą karboksylową.
- Brak cyklizacji i lipidacji: szczególną cechą jest wyłącznie wiązanie metalu.
Według danych strukturalnych peptyd koordynuje jon miedzi(II) przez trzy atomy azotu: grupę aminową glicyny, zdeprotonowany azot amidowy wiązania Gly-His oraz jeden z atomów azotu pierścienia imidazolowego histydyny. Czwartą pozycję zajmuje, zależnie od otoczenia, woda lub grupa karboksylanowa. Grupa aminowa łańcucha bocznego lizyny pozostaje niezwiązana i może występować w postaci protonowanej; zależnie od formy substancja stała zawiera zatem dodatkowo przeciwjon. Miedź nadaje liofilizatowi niebieską barwę, podczas gdy wolny GHK jest białym proszkiem.
Odróżnienie od pokrewnych cząsteczek
- GHK bez miedzi: ta sama sekwencja bez metalu, około 340,4 g/mol. Wolny peptyd (CAS 49557-75-7) i kompleks miedziowy (CAS 89030-95-5) są zarejestrowane oddzielnie; COA powinien jasno wskazywać, której formy dotyczą podane dane.
- KPV: również tripeptyd o niemal tej samej masie, pochodzi jednak z C-końca α-MSH i nie jest kompleksem metalu. Jony protonowane leżą przy m/z 341,19 (GHK) i 343,23 (KPV).
- Glutation: tripeptyd z wiązaniem γ-peptydowym i wolną grupą tiolową; jego chemię kształtują przede wszystkim reakcje redoks grupy tiolowej, a zdefiniowany kompleks z miedzią nie występuje.
- MT1 i MT2: analogi melanokortyn złożone odpowiednio z 13 i siedmiu aminokwasów. Należą do tej samej kategorii katalogowej, są jednak ligandami receptorów, a nie kompleksami metali.
Na co zwracać uwagę w analityce i COA
W widmie mas w grę wchodzą dwie grupy sygnałów, zależnie od tego, czy kompleks przetrwa pomiar:
- Wolny peptyd: [M+H]+ przy m/z około 341,19; możliwe są ponadto jon naładowany dwukrotnie [M+2H]2+ przy m/z około 171,10 i addukt sodowy [M+Na]+ przy m/z około 363,18.
- Kompleks miedziowy: jon naładowany jednokrotnie, złożony z peptydu i miedzi po oddaniu jednego protonu, przy m/z około 402,11, któremu towarzyszy drugi sygnał przy około 404,11. Odstęp dwóch jednostek masy i stosunek intensywności około 7 : 3 odpowiadają naturalnemu rozkładowi izotopów miedzi-63 i miedzi-65.
W HPLC z odwróconymi fazami GHK-Cu wykazuje dwie osobliwości. Tripeptyd jest bardzo polarny i na wypełnieniu C18 jest zatrzymywany tylko słabo; ponadto kompleks może dysocjować w typowych kwaśnych fazach ruchomych, tak że chromatogram przedstawia zasadniczo sam peptyd. Jako piki poboczne w grę wchodzą produkty rozszczepienia, takie jak Gly-His i His-Lys, oraz błędne sekwencje z syntezy. Sygnały przy +16 Da wskazują na utlenienie; w peptydach miedziowych za miejsce ataku uchodzi przede wszystkim reszta histydyny.
Czystość to nie to samo co zawartość peptydu: czystość HPLC jest udziałem powierzchni wśród sygnałów aktywnych w UV; nie obejmuje miedzi, przeciwjonów takich jak octan lub trifluorooctan (TFA) ani wody resztkowej. Już w obojętnym kompleksie 1:1 o masie około 401,9 g/mol na miedź przypada niespełna 16 % masy; przeciwjony i wilgoć dodatkowo obniżają udział peptydu. Samej zawartości miedzi żadna z obu metod nie określa. GHK-Cu jest regularnie badany zewnętrznie metodami HPLC i spektrometrii mas; dostępne certyfikaty analizy (COA) znajdują się w dziale laboratoryjnym, a brakujący jeszcze certyfikat jest tam oznaczony jako oczekujący. Budowę i znaczenie COA wyjaśniają poradniki Jak prawidłowo czytać certyfikat analizy i Czystość peptydów badawczych.
Przechowywanie i praca w laboratorium
Zasada ogólna: przechowywać w chłodnym, suchym i chronionym przed światłem miejscu, przez dłuższy czas w stanie zamrożonym, a fiolkę przed otwarciem doprowadzić do temperatury pokojowej. Szczegóły opisuje poradnik Przechowywanie liofilizowanych peptydów. W przypadku GHK-Cu dochodzi kilka dodatkowych kwestii:
- Wilgoć: sole krótkich, zasadowych peptydów łatwo pochłaniają wodę. Dlatego fiolkę należy otwierać tylko na krótko i od razu ponownie zamykać.
- Barwa jako kontrola: typowy jest równomiernie niebieski liofilizat. Wyraźne zmiany barwy lub zbrylenie są powodem, by sprawdzić certyfikat i historię przechowywania.
- Zgodność chemiczna: silne czynniki chelatujące, takie jak EDTA, mogą odbierać kompleksowi miedź, a dodatki redukujące, takie jak ditiotreitol, lub tiole, takie jak glutation, mogą redukować miedź(II). Bufory i dodatki powinny to uwzględniać, jeśli badany jest nienaruszony kompleks.
Kontekst badawczy
GHK-Cu jest badany w pracach in vitro i przedklinicznych. Typowe zagadnienia dotyczą chemii koordynacyjnej krótkich peptydów miedziowych, wymiany miedzi między peptydami a białkami, a także profili ekspresji genów i składników macierzy zewnątrzkomórkowej w modelach komórkowych. Takie wyniki opisują cząsteczkę w warunkach laboratoryjnych i nie dają się przenieść na zastosowania.
Wyłącznie do badań: nota prawna
GHK-Cu jest oferowany przez GPeptides wyłącznie jako odczynnik laboratoryjny do badań in vitro. Nie jest przeznaczony do stosowania na ciele ani wewnątrz ciała ludzi lub zwierząt i nie jest wprowadzany do obrotu ani jako produkt leczniczy, ani jako kosmetyk. GPeptides nie podaje wskazówek dotyczących stosowania ani stwierdzeń o działaniu; analityka potwierdza tożsamość i czystość odczynnika – i nic ponadto. Peptyd miedziowy jest dostępny jako pojedyncza fiolka GHK-Cu i w zestawie GLP-3 + GHK-Cu; zgodnie z przyjętym na rynku składem zawierają go także blendy GLOW Stack i KLOW. Pokrewne peptydy obejmuje kategoria Melanokortyny & peptydy miedziowe.
Pasujące kategorie: Melanokortyny & peptydy miedziowe
Pasujące produkty
Poradniki na ten temat
Jak prawidłowo czytać certyfikat analizy (COA)
Badany towar, metoda badania, czystość w procentach, data badania: COA jest tak dobry, jak dane, które zawiera. Tak sprawdza się, czy certyfikat pasuje do fiolki w ręku.
Czytaj dalej: Jak prawidłowo czytać certyfikat analizy (COA) →Czystość peptydów badawczych: co oznaczają wartości procentowe
Czystość to nie to samo co zawartość. Kto porównuje COA, powinien umieć rozróżnić procent powierzchni, zawartość netto peptydu i typowe produkty uboczne syntezy peptydów.
Czytaj dalej: Czystość peptydów badawczych: co oznaczają wartości procentowe →Przechowywanie liofilizowanych peptydów: temperatura, światło, wilgoć
Sucho, zimno, ciemno: liofilizaty są odporne, ale nie niewrażliwe. Najważniejsze zasady dla nieotwartych fiolek, napoczętych fiolek i roztworów.
Czytaj dalej: Przechowywanie liofilizowanych peptydów: temperatura, światło, wilgoć →

