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GHK-Cu : structure, analytique et manipulation dans la recherche
Dans le GHK-Cu, le tripeptide non modifié Gly-His-Lys lie un ion cuivre(II). Ce guide explique la dénomination, la liaison du cuivre, la distinction avec les molécules apparentées, les masses attendues dans le certificat d’analyse ainsi que le stockage et la manipulation du réactif.
Réservé à la recherche- Publié2026-09-24
- Mis à jour2026-09-24
- AuteurRédaction GPeptides (exploitant)
Présentation et dénomination
GHK-Cu désigne un complexe peptide-métal : le tripeptide GHK porte un ion cuivre(II) lié. Les trois lettres sont les codes à une lettre de la glycine (G), de l’histidine (H) et de la lysine (K) ; le suffixe « -Cu » est le symbole chimique du cuivre. Des variantes comme Cu-GHK, tripeptide de cuivre ou Copper Peptide désignent le même complexe, mais pas nécessairement la même stœchiométrie ni le même contre-ion.
Dans le catalogue, la molécule apparaît dans quatre produits : « GHK-Cu » est le flacon individuel ; dans le set « GLP-3 + GHK-Cu », elle occupe un flacon à part. « GLOW Stack » et « KLOW » sont des noms commerciaux de blends dans lesquels le GHK-Cu, selon la convention usuelle du marché, est l’un de plusieurs composants au sein du même lyophilisat. Le peptide de cuivre ne peut donc être analysé isolément que dans le flacon individuel et dans le set.
Structure en détail
La séquence est Gly-His-Lys. Comme la glycine est le seul acide aminé protéinogène achiral, le tripeptide ne possède que deux stéréocentres, tous deux en configuration L. Contrairement à de nombreux peptides de recherche plus longs, le GHK n’est pas modifié :
- Pas d’acétylation N-terminale : le groupe amino libre de la glycine fait partie du site de liaison du cuivre. Un groupe acétyle bloquerait précisément cette position.
- Pas d’amidation C-terminale : la lysine se termine par un groupe carboxyle libre.
- Ni cyclisation, ni lipidation : la particularité réside uniquement dans la liaison du métal.
D’après les données structurales, le peptide coordonne l’ion cuivre(II) par trois atomes d’azote : le groupe amino de la glycine, l’azote amide déprotoné de la liaison Gly-His et un azote du cycle imidazole de l’histidine. Une quatrième position est occupée, selon l’environnement, par de l’eau ou par un groupe carboxylate. Le groupe amino de la chaîne latérale de la lysine reste libre et peut être protoné ; selon la forme, le solide contient donc en plus un contre-ion. Le cuivre donne au lyophilisat une coloration bleue, tandis que le GHK libre est une poudre blanche.
Distinction avec les molécules apparentées
- GHK sans cuivre : la même séquence sans métal, environ 340,4 g/mol. Le peptide libre (CAS 49557-75-7) et le complexe de cuivre (CAS 89030-95-5) sont enregistrés séparément ; un COA devrait indiquer clairement à quelle forme se rapportent les données.
- KPV : également un tripeptide et de masse presque identique, mais issu de l’extrémité C-terminale de l’α-MSH, et il ne s’agit pas d’un complexe métallique. Les ions protonés se situent à m/z 341,19 (GHK) et 343,23 (KPV).
- Glutathion : tripeptide à liaison γ-peptidique et groupe thiol libre ; sa chimie est surtout marquée par les réactions redox du groupe thiol, et il ne forme pas de complexe de cuivre défini.
- MT1 et MT2 : analogues de la mélanocortine de 13 et de sept acides aminés respectivement. Ils partagent la catégorie du catalogue, mais sont des ligands de récepteurs et non des complexes métalliques.
Points d’attention pour l’analytique et le COA
Dans le spectre de masse, deux groupes de signaux entrent en ligne de compte, selon que le complexe résiste ou non à la mesure :
- Peptide libre : [M+H]+ vers m/z 341,19 ; sont également possibles l’ion doublement chargé [M+2H]2+ vers m/z 171,10 et l’adduit sodium [M+Na]+ vers m/z 363,18.
- Complexe de cuivre : un ion simplement chargé formé du peptide et du cuivre avec perte d’un proton, vers m/z 402,11, accompagné d’un second signal vers 404,11. L’écart de deux unités de masse et un rapport d’intensité d’environ 7 : 3 correspondent à la distribution naturelle des isotopes cuivre 63 et cuivre 65.
En HPLC en phase inverse, le GHK-Cu présente deux particularités. Le tripeptide est très polaire et n’est que faiblement retenu sur un matériau C18 ; de plus, le complexe peut se dissocier dans les éluants acides usuels, si bien que le chromatogramme reflète essentiellement le peptide. Comme pics secondaires, on peut rencontrer des produits de clivage comme Gly-His et His-Lys ainsi que des séquences de délétion issues de la synthèse. Des signaux à +16 Da indiquent une oxydation ; pour les peptides de cuivre, le résidu histidine est considéré comme le principal point d’attaque.
La pureté n’est pas la teneur en peptide : la pureté HPLC est une part de surface parmi les signaux actifs en UV ; elle ne prend en compte ni le cuivre, ni les contre-ions comme l’acétate ou le trifluoroacétate (TFA), ni l’eau résiduelle. Dès le complexe neutre 1:1, d’environ 401,9 g/mol, un peu moins de 16 % de la masse revient au cuivre ; les contre-ions et l’humidité abaissent encore la part de peptide. Aucune des deux méthodes ne chiffre la teneur en cuivre elle-même. Le GHK-Cu est contrôlé régulièrement en externe par HPLC et spectrométrie de masse ; les certificats d’analyse (COA) disponibles sont consultables dans l’espace laboratoire, où un certificat encore manquant est signalé « en attente ». Les guides Bien lire un certificat d’analyse et Pureté des peptides de recherche expliquent la structure et la portée d’un COA.
Stockage et manipulation au laboratoire
Règle de base : conserver au froid, au sec et à l’abri de la lumière, congelé pour des durées prolongées, et laisser le flacon revenir à température ambiante avant de l’ouvrir. Le guide Stocker des peptides lyophilisés donne les détails. Pour le GHK-Cu, quelques points s’y ajoutent :
- Humidité : les sels de peptides courts et basiques absorbent facilement l’eau. N’ouvrez donc le flacon que brièvement et refermez-le aussitôt.
- La coloration comme contrôle : un lyophilisat d’un bleu homogène est typique. Des changements de couleur marqués ou une agglomération sont une raison de vérifier le certificat et l’historique de stockage.
- Compatibilité chimique : des chélateurs forts comme l’EDTA peuvent retirer le cuivre du complexe ; des additifs réducteurs comme le dithiothréitol ou des thiols comme le glutathion peuvent réduire le cuivre(II). Le choix des tampons et des additifs doit en tenir compte lorsque le complexe intact est étudié.
Contexte de recherche
Le GHK-Cu est étudié en recherche in vitro et préclinique. Les questions typiques portent sur la chimie de coordination des peptides de cuivre courts, l’échange de cuivre entre peptides et protéines, ainsi que sur les profils d’expression génique et les composants de la matrice extracellulaire dans des modèles cellulaires. Ces résultats décrivent la molécule dans des conditions de laboratoire et ne sont pas transposables à des applications.
Usage réservé à la recherche : mention légale
Chez GPeptides, le GHK-Cu est proposé exclusivement comme réactif de laboratoire destiné à la recherche in vitro. Il n’est pas destiné à une application sur ou dans le corps humain ou animal et n’est mis sur le marché ni comme médicament ni comme produit cosmétique. GPeptides ne donne aucune information sur l’application ni aucune affirmation sur des effets ; l’analytique atteste l’identité et la pureté du réactif, rien de plus. Le peptide de cuivre est disponible en flacon individuel GHK-Cu et dans le set GLP-3 + GHK-Cu ; selon la composition usuelle du marché, il est en outre contenu dans les blends GLOW Stack et KLOW. Les peptides apparentés sont répertoriés dans la catégorie Mélanocortines & peptides de cuivre.
Catégories associées: Mélanocortines & peptides de cuivre
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